Стерилизация, определение, методы, контроль качества
Стерилизация
Контроль стерилизации
Стерилизация — удаление или уничтожение всех живых микроорганизмов вегетативных и споровых форм внутри или на поверхности предметов. Самым распространенным методом стерилизации является воздействие высокой температуры. При температуре, приближающейся к 0 С, происходит гибель большинства патогенных бактерий и вирусов. Споры почвенных бактерий-термофилов погибают при кипячении в течение 8,5 часов. Микроорганизмы, попавшие в глубинные слои земли, или покрытые свернувшейся кровью, оказываются защищенными от воздействия высокой температуры и сохраняют свою жизнеспособность. При стерилизации физическими методами применяют действие высоких температур, давления, ультрафиолетового облучения и др. Наиболее простой, но надежный вид стерилизации — прокаливание. Его применяют при поверхностной стерилизации негорючих и теплоустойчивых предметов непосредственно перед их использованием. Другим простым и легко доступным методом стерилизации считается кипячение. Этот процесс проводят в стерилизаторе — металлической коробке прямоугольной формы с двумя ручками и плотно закрывающейся крышкой. Внутри расположена вынимающаяся металлическая сетка с ручками по бокам, на которую кладут стерилизуемый инструмент. Основной недостаток метода заключается в том, что он не уничтожает споры, а только вегетативные формы. При паровой стерилизации необходимо выполнение определенных условий, которые гарантируют ее эффективность и сохранение стерильности изделий в течение определенного срока. Прежде всего, стерилизация инструментов, операционного белья, перевязочного материала должна проводиться в упаковке. С этой целью используют: Обязательное требование к упаковке — герметичность. Сроки сохранения стерильности зависят от вида упаковки и составляют трое суток для изделий простерилизованных в коробках без фильтров, в двойной мягкой упаковке из бязи, бумаги мешочной влагопрочной. В стерилизационных коробках с фильтрами стерильность изделий сохраняется в течение года. Процесс стерилизации сухим жаром проводят в сухожаровом шкафу в печи Пастера и др. В корпусе шкафа расположены рабочая камера, в которой имеются полки для размещения предметов для обработки, и нагревательные элементы, которые служат для равномерного нагрева воздуха в рабочей камере. Необходимо помнить, что при температуре 0 С бумага и вата желтеют, при более высокой температуре — сгорают обугливаются. Началом стерилизации является тот момент, когда температура в печи достигает нужной величины. После окончания стерилизации печь выключается, прибор остывает до 50 0 С, после чего из него вынимают простерилизованные предметы. Изделия в воздушном стерилизаторе можно стерилизовать без упаковки, но только в тех случаях, если они используются сразу же после стерилизации. В качестве упаковки может быть использована бумага мешочная, изготовленная по ГОСТ , в ней изделия хранятся не менее 3-х суток. Режим воздушной стерилизации представлен двумя значениями температуры — 0 С в течение 2,5 часов, либо 0 С — в течение 1 часа. Этот вид стерилизации производится в аппарате Коха или в автоклаве при незавинченной крышке и открытом выпускном кране. Аппарат Коха представляет собой металлический полый цилиндр с двойным дном. Стерилизуемый материал загружают в камеру аппарата не плотно, для того, что бы обеспечить возможность наибольшего контакта его с паром. Начальный подогрев воды в приборе происходит в течение минут. Текучим паром стерилизуют материалы, которые разлагаются или портятся при температуре выше 0 С — питательные среды с углеводами, витаминами, растворы углеводов и т. Стерилизацию текучим паром проводят дробным методом — при температуре не выше 0 С по минут в течение 3-х дней. При этом вегетативные формы бактерий погибают, а споры сохраняют жизнеспособность и прорастают в течение суток при комнатной температуре. Последующее прогревание обеспечивает гибель этих вегетативных клеток, появляющихся из спор в промежутках между этапами стерилизации. Тиндализация — метод дробной стерилизации, при котором прогревание стерилизуемого материала проводится при температуре 0 С в течение часа дней подряд. Пастеризация — однократное нагревание материала до 0 С в течение минут , 0 С в течение минут. Используется для уничтожения бесспоровых форм микробов в пищевых продуктах молоко, соки, вино, пиво. Стерилизация паром под давлением. Стерилизация проводится в автоклаве под давлением обычно посуда, физиологический раствор, дистиллированная вода, питательные среды, не содержащие белков и углеводов, различные приборы, изделия из резины в течение минут при температуре 0 С 1 атм. Любые растворы, содержащие белки и углеводы, стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм. Любой инфицированный микроорганизмами заразный материал стерилизуют при давлении в 1,5 атм. Когда стерилизуемые растворы находятся в стеклянных сосудах, по окончании цикла стерилизации необходимо контролировать время охлаждения, а также медленно понижать давление, так как открывать автоклав можно только после того, как в нем установилось давление окружающей среды. Излучение может быть неионизирующим ультрафиолетовое, инфракрасное, ультразвуковое, радиочастотное и ионизирующим — корпускулярным электроны и ли электромагнитным рентгеновские лучи или гамма-лучи. Эффективность облучения зависит от полученной дозы, а выбор дозы определяется микробным загрязнением, формой и составом материала, подлежащего стерилизации. Ультрафиолетовое облучение нм обладает малой проникающей способностью, поэтому требует достаточно длительного воздействия и используется в основном для стерилизации воздуха, открытых поверхностей в помещениях. Ионизирующее излучение, в первую очередь, гамма-облучение, успешно применяется для стерилизации в промышленных условиях медицинских изделий из термолабильных материалов, поскольку позволяют быстро облучать материалы еще на стадии производства при любой температуре и герметичной упаковке. В настоящее время широко используется для получения стерильных одноразовых пластмассовых изделий шприцы, системы для переливания крови, чашки Петри , и хирургических перевязочных и шовных материалов. Фильтры задерживают микроорганизмы благодаря пористой структуре матрикса, но для пропускания раствора через фильтр требуется вакуум или давление, поскольку сила поверхностного натяжения при таком малом размере пор не дает жидкостям фильтроваться. Глубинные фильтры состоят из волокнистых или гранулированных материалов асбест, фарфор, глина , которые спрессованы, свиты или связаны в лабиринт проточных каналов, поэтому четкие параметры размера пор отсутствуют. Частицы задерживаются в них в результате адсорбции и механического захвата в матриксе фильтра, что обеспечивает достаточно большую емкость фильтров, но может приводить к задержке части раствора. Фильтрующие фильтры имеют непрерывную структуру, и эффективность захвата ими частиц определяется в основном соответствию их размеру пор фильтра. Мембранные фильтры имеют низкую емкость, но эффективность не зависит от скорости протока и перепада давлений, а фильтрат почти или совсем не задерживается. Мембранная фильтрация в настоящее время широко применяется для стерилизации масел, мазей и растворов, неустойчивых к нагреванию — растворы для внутривенных инъекций, диагностические препараты, растворы витаминов и антибиотиков, сред для культур тканей и т. Химические методы стерилизации, связанные с применением химических веществ, обладающих явно выраженной антимикробной активностью, делятся на 2 группы: Химические методы стерилизации газами используются в лечебно-профилактических учреждениях для обеззараживания медицинских материалов и оборудования, которые нельзя стерилизовать другими способами оптические приборы, кардиостимуляторы, аппараты искусственного кровообращения, эндоскопы, изделия из полимеров, стекла. Бактерицидными свойствами обладают многие газы формальдегид, окись пропилена, озон, надуксусную кислота и метилбромид , но шире всего используется окись этилена, поскольку она хорошо совместима с различными материалами не вызывает коррозию металла, порчи обрабатываемых изделий из бумаги, резины и всех марок пластмасс. Время экспозиции при использовании газового метода стерилизации варьирует от 6 до 18 часов в зависимости от концентрации газовой смеси и объема специального аппарата емкости для этого вида стерилизации. Контроль стерильности производят в специально оборудованных боксах, исключающих возможность вторичного контакта изделий с микрофлорой. Производят посев изделий в питательную среду для контроля. При отсутствии роста бактерий дают заключение о стерильности изделия. Стерилизация растворами применяется при обработке больших поверхностей пространств или медицинских приборов, которые не могут быть обеззаражены другими методами. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения на наличие крови проводят путем постановки амидопириновой пробы. Остаточные количества щелочных компонентов моющего средства определяют с помощью фенолфталеиновой пробы. Используют только эмалированные емкости без повреждений со стеклянными или пластмассовыми крышками. После стерилизации изделия быстро извлекают из раствора с помощью пинцетов или корнцангов, удаляют раствор из каналов и полостей, затем дважды последовательно промывают простерилизованные изделия стерильной водой. Простерилизованные изделия используют сразу по назначению или помещают в стерильную емкость, выложенную стерильной простыней, и хранят не более 3-х суток. В специальном журнале ведут обязательный учет всех циклов химической стерилизации с указанием даты, точного времени стерилизации закладки, выемки раствора , название используемого препарата и его концентрации. Препараты, используемые для стерилизации, классифицируются по группам: Комплекс дезинфекционных мероприятий, ориентированных на удаление или уничтожение возбудителей инфекционных болезней в объектах или на абиотических объектах окружающей среды, то есть при их передаче от источника к восприимчивым людям, делится на 2 вида: Очаговая дезинфекция осуществляется в эпидемических очагах и в свою очередь подразделяется на текущую , если источник возбудителя присутствует, и з аключительную , если источник удален. Текущая дезинфекция направлена на постоянное обеззараживание экскрементов, рвотных масс, мокроты, патологического отделяемого, перевязочного материала и др. Заключительная дезинфекциянаправлена на уничтожение патогенных микроорганизмов, оставшихся в очаге в жизнеспособном состоянии на различных предметах, хотя источник удален, то есть после госпитализации, выздоровления или смерти больного. При заключительной дезинфекции обработке подлежат помещения, экскременты, рвотные массы, белье, предметы быта и все другие объекты, которые могли быть контаминированы возбудителями данного заболевания. Этот вид дезинфекции, как правило, осуществляется специализированными службами органов госэпиднадзора. Профилактическая дезинфекция проводится в том случае, если источник инфекции не обнаружен, но предполагается возможность его существования. Этот вид дезинфекции чаще всего используют в медицинских учреждениях профилактика профессионального заражения медицинского персонала внутрибольничных инфекций , на предприятиях общественного питания, предприятиях, изготавливающих, перерабатывающих и реализующих пищевые продукты, а также в местах массовых скоплений людей, где может находиться источник возбудителя инфекционного заболевания среди здорового населения. При кишечных инфекциях дезинфекционные мероприятия направлены на очистку и обеззараживание источников питьевого водоснабжения, сточных вод, отбросов, пищевых продуктов, материалов от больного, посуды, белья, пищеблоков, санузлов. В очаге проводят и текущую, и заключительную дезинфекцию. При инфекциях дыхательных путей дезинфекцию проводят с целью снижения микробного загрязнения воздуха конкретных помещений, что может достигаться путем не только влажной уборки и обеззараживания объектов в окружении больного, но и проветривания или УФ-облучения воздуха в данном помещении. В очагах трансмиссивных инфекций дезинфекционные мероприятия проводят только при чуме, туляремии, лихорадке Ку, и на объектах, где работают с кровью. При инфекциях наружных покровов дезинфекции подлежат все вещи, бывшие в употреблении белье, расчески, ножницы, губки в банях, душевых, бассейнах, парикмахерских, причем рекомендуется по возможности использовать универсальные препараты, обладающие бактерицидным в т. При профилактике внутрибольничных инфекций дезинфекции должны подвергаться все изделия медицинского назначения после каждого пациента, руки персонала, раневая поверхность, операционное поле и т. Биологическая стерилизация — основана на применении антибиотиков, используется ограниченно — в культурах тканей для культивирования вирусов. Плановый контроль работы стерилизатора проводят не реже 2-х раз в год. Самоконтроль работы стерилизатора проводят при каждой загрузке аппарата. Физические и химические методы контроля являются методами оперативного контроля параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов, результаты которого учитывают в процессе стерилизационного цикла или сразу после его окончания. Физический метод контроля осуществляют с помощью средств измерений температуры термометры и давления манометры. Химический метод контроля предназначен для оперативного контроля одного или нескольких в совокупности режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов. Осуществляют его с помощью химических тестов и термохимических индикаторов. Химические тесты — это запаянная с обоих концов стеклянная трубка, заполненная смесью химических соединений с органическими красителями, или только химическим соединением, изменяющим свое агрегатное состояние и цвет при достижении для него определенной температуры плавления. Упакованные химические тесты номеруют и размещают в разных контрольных точках паровых и воздушных стерилизаторов. Термохимические индикаторы представляют собой полоски бумаги, на одной стороне которых нанесен индикаторный слой, изменяющий свой цвет на цвет эталона при соблюдении температурных параметров режима стерилизации. Биологический метод предназначен для контроля эффективности работы стерилизаторов на основании гибели спор тест-культур. Осуществляют его с помощью биотестов. Биотест — дозированное количество тест-культуры на носителе, например, на диске из фильтровальной бумаги, или помещенное в упаковку стеклянные флаконы для лекарственных средств или чашечки из фольги. В качестве тест-культуры для контроля работы парового стерилизатора используются споры Bacillus stearothermophilus ВКМ В, а воздушного стерилизатора — споры Bacillus licheniformis. После стерилизации тесты помещают на питательную среду. Отсутствие роста на питательной среде свидетельствует о гибели спор во время стерилизации. Автомобили Астрономия Биология География Дом и сад Другие языки Другое Информатика История Культура Литература Логика Математика Медицина Металлургия Механика Образование Охрана труда Педагогика Политика Право Психология Религия Риторика Социология Спорт Строительство Технология Туризм Физика Философия Финансы Химия Черчение Экология Экономика Электроника. Контроль стерилизации 1 2.
Методические указания Главного государственного санитарного врача Республики Беларусь от 30.11.1999 N 90-9908 "3.5.4. Стерилизация. Контроль качества стерилизации изделий медицинского назначения"
Основные противоэпидемические мероприятия для предотвращения возникновения ВБИ. Стерилизация — удаление или уничтожение всех живых микроорганизмов вегетативных и споровых форм внутри или на поверхности предметов. Стерилизация проводится различными методами: При стерилизации физическими методами используют действие высоких температур, давления, ультрафиолетового облучения и др. Самым распространенным методом стерилизации является воздействие высокой температуры. При температуре, приближающейся к 0 С, происходит гибель большинства патогенных бактерий и вирусов. Споры почвенных бактерий-термофилов погибают при кипячении в течение 8,5 часов. Наиболее простой, но надежный вид стерилизации — прокаливание. Его применяют при поверхностной стерилизации негорючих и теплоустойчивых предметов непосредственно перед их использованием. Другим простым и легко доступным методом стерилизации считается кипячение. Этот процесс проводят в стерилизаторе — металлической коробке прямоугольной формы с двумя ручками и плотно закрывающейся крышкой. Внутри расположена вынимающаяся металлическая сетка с ручками по бокам, на которую кладут стерилизуемый инструмент. Основной недостаток метода заключается в том, что он не уничтожает споры, а только вегетативные формы. При паровой стерилизации необходимо выполнение определенных условий, которые гарантируют ее эффективность и сохранение стерильности изделий в течение определенного срока. Прежде всего, стерилизация инструментов, операционного белья, перевязочного материала должна проводиться в упаковке. С этой целью используют: Обязательное требование к упаковке — герметичность. Сроки сохранения стерильности зависят от вида упаковки и составляют трое суток для изделий простерилизованных в коробках без фильтров, в двойной мягкой упаковке из бязи, бумаги мешочной влагопрочной. Процесс стерилизации сухим жаром проводят в сухожаровом шкафу в печи Пастера и др. В корпусе шкафа расположены рабочая камера, в которой имеются полки для размещения предметов для обработки и нагревательные элементы, которые служат для равномерного нагрева воздуха в рабочей камере. Необходимо помнить, что при температуре 0 С бумага и вата желтеют, при более высокой температуре — сгорают обугливаются. Началом стерилизации является тот момент, когда температура в печи достигает нужной величины. После окончания стерилизации печь выключается, прибор остывает до 50 0 С, после чего из него вынимают простерилизованные предметы. Этот вид стерилизации производится в аппарате Коха или в автоклаве при незавинченной крышке и открытом выпускном кране. Аппарат Коха представляет собой металлический полый цилиндр с двойным дном. Стерилизуемый материал загружают в камеру аппарата не плотно, для того, что бы обеспечить возможность наибольшего контакта его с паром. Начальный подогрев воды в приборе происходит в течение минут. Текучим паром стерилизуют материалы, которые разлагаются или портятся при температуре выше 0 С — питательные среды с углеводами, витаминами, растворы углеводов и т. Стерилизацию текучим паром проводят дробным методом — при температуре не выше 0 С по минут в течение 3-х дней. При этом вегетативные формы бактерий погибают, а споры сохраняют жизнеспособность и прорастают в течение суток при комнатной температуре. Последующее прогревание обеспечивает гибель этих вегетативных клеток, появляющихся из спор в промежутках между этапами стерилизации. Тиндализация — метод дробной стерилизации, при котором прогревание стерилизуемого материала проводится при температуре 0 С в течение часа дней подряд. Пастеризаци я — однократное нагревание материала до 0 С в течение минут , 0 С в течение минут. Используется для уничтожения бесспоровых форм микробов в пищевых продуктах молоко, соки, вино, пиво. Стерилизация паром под давлением. Стерилизация проводится в автоклаве под давлением обычно посуда, физиологический раствор, дистиллированная вода, питательные среды, не содержащие белков и углеводов, различные приборы, изделия из резины в течение минут при температуре 0 С 1 атм. Любые растворы, содержащие белки и углеводы, стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм. Любой инфицированный микроорганизмами заразный материал стерилизуют при давлении в 1,5 атм. Излучение может быть неионизирующим ультрафиолетовое, инфракрасное, ультразвуковое, радиочастотное и ионизирующим — корпускулярным электроны или электромагнитным рентгеновские лучи или гамма-лучи. Ультрафиолетовое облучение нм обладает малой проникающей способностью, поэтому требует достаточно длительного воздействия и используется в основном для стерилизации воздуха, открытых поверхностей в помещениях. Ионизирующее излучение , в первую очередь, гамма-облучение успешно применяется для стерилизации в промышленных условиях медицинских изделий из термолабильных материалов, поскольку позволяет быстро облучать материалы еще на стадии производства при любой температуре и герметичной упаковке. Используется для получения стерильных одноразовых пластмассовых изделий шприцы, системы для переливания крови, чашки Петри , и хирургических перевязочных и шовных материалов. Фильтры задерживают микроорганизмы благодаря пористой структуре матрикса, но для пропускания раствора через фильтр требуется вакуум или давление, поскольку сила поверхностного натяжения при таком малом размере пор не дает жидкостям фильтроваться. Существуют 2 основных типа фильтров — глубинные и фильтрующие. Глубинные фильтры состоят из волокнистых или гранулированных материалов асбест, фарфор, глина , которые спрессованы, свиты или связаны в лабиринт проточных каналов, поэтому четкие параметры размера пор отсутствуют. Частицы задерживаются в них в результате адсорбции и механического захвата в матриксе фильтра, что обеспечивает достаточно большую емкость фильтров, но может приводить к задержке части раствора. Фильтрующие фильтры имеют непрерывную структуру, и эффективность захвата ими частиц определяется в основном соответствию их размеру пор фильтра. Мембранные фильтры имеют низкую емкость, их эффективность не зависит от скорости протока и перепада давлений, а фильтрат почти или совсем не задерживается. Мембранная фильтрация в настоящее время широко применяется для стерилизации масел, мазей и растворов, неустойчивых к нагреванию, — растворы для внутривенных инъекций, диагностические препараты, растворы витаминов и антибиотиков, среды для культур тканей и т. Химические методы стерилизации, связанные с использованием химических веществ, обладающих явно выраженной антимикробной активностью, делятся на 2 группы: Химические методы стерилизации газами применяют в лечебно-профилактических учреждениях для обеззараживания медицинских материалов и оборудования, которые нельзя стерилизовать другими способами оптические приборы, кардиостимуляторы, аппараты искусственного кровообращения, эндоскопы, изделия из полимеров, стекла. Бактерицидными свойствами обладают многие газы формальдегид, окись пропилена, озон, надуксусная кислота и метилбромид , но шире всего используется окись этилена, поскольку она хорошо совместима с различными материалами не вызывает коррозию металла, порчи обрабатываемых изделий из бумаги, резины и всех марок пластмасс. Время экспозиции при использовании газового метода стерилизации варьирует от 6 до 18 часов в зависимости от концентрации газовой смеси и объема специального аппарата емкости для этого вида стерилизации. Стерилизация растворами применяется при обработке больших поверхностей пространств или медицинских приборов, которые не могут быть обеззаражены другими методами. Согласно требованиям отраслевого стандарта большинство изделий медицинского назначения из металла, стекла, пластмасс, резины проходят предстерилизационную обработку, состоящую из нескольких этапов: Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения на наличие крови проводят путем постановки амидопириновой пробы. Остаточные количества щелочных компонентов моющего средства определяют с помощью фенолфталеиновой пробы. После стерилизации изделия быстро извлекают из раствора с помощью пинцетов или корнцангов, удаляют раствор из каналов и полостей, затем дважды последовательно промывают простерилизованные изделия стерильной водой. Простерилизованные изделия используют сразу по назначению или помещают в стерильную емкость, выложенную стерильной простыней, и хранят не более 3-х суток. Препараты, используемые для стерилизации, классифицируют по группам: Биологическая стерилизация основана на применении антибиотиков; используют ограниченно. Контроль стерилизации осуществляется физическими, химическими и биологическими методами. Физический метод контроля осуществляют с помощью средств измерений температуры термометры и давления манометры. Химический метод контроля предназначен для оперативного контроля одного или нескольких в совокупности режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов. Осуществляют его с помощью химических тестов и термохимических индикаторов. Химические тесты — это запаянная с обоих концов стеклянная трубка, заполненная смесью химических соединений с органическими красителями, или только химическим соединением, изменяющим свое агрегатное состояние и цвет при достижении для него определенной температуры плавления. Упакованные химические тесты нумеруют и размещают в разных контрольных точках паровых и воздушных стерилизаторов. Термохимические индикаторы представляют собой полоски бумаги, на одной стороне которых нанесен индикаторный слой, изменяющий свой цвет на цвет эталона при соблюдении температурных параметров режима стерилизации. Биологический метод предназначен для контроля эффективности работы стерилизаторов на основании гибели спор тест-культур. Осуществляют его с помощью биотестов. Биотест — дозированное количество тест-культуры на носителе, например, на диске из фильтровальной бумаги, или помещенное в упаковку стеклянные флаконы для лекарственных средств или чашечки из фольги. В качестве тест-культуры для контроля работы парового стерилизатора используются споры Bacillus stea r othermophilus ВКМ В, а воздушного стерилизатора — споры Bacillus licheniformis. После стерилизации тесты помещают на питательную среду. Отсутствие роста на питательной среде свидетельствует о гибели спор во время стерилизации. Этот вид контроля проводят 2 раза в год. Для этого используют биотесты, предназначенные для конкретного вида паровой или суховоздушной стерилизации. Пронумерованные пакеты с биотестами размещают в контрольных точках стерилизатора. После проведенной стерилизации в пробирки с биотестами вносят 0,5 мл цветной питательной среды, начиная со стерильной пробирки для контроля питательной среды и заканчивая контрольным тестом, не подвергавшимся стерилизации контроль культур. После чего проводят учет изменения цвета питательной среды. В контроле стерильная проба цвет среды не изменяется. В пробирке с контролем культуры цвет среды должен измениться на цвет указанный в паспорте, что свидетельствует о наличии жизнеспособных спор. Работа считается удовлетворительной, если цвет питательной среды во всех биотестах не изменился. Результаты регистрируют в журнале. При необходимости контроля за стерильностью медицинских изделий, подвергнутых стерилизации, лаборант бактериологической лаборатории или операционная сестра под руководством сотрудников баклаборатории осуществляет забор проб на стерильность. Задача центрального стерилизационного отделения ЦСО состоит в обеспечении лечебно-профилактических учреждений стерильными изделиями медицинского назначения: Помещения любого центрального стерилизационного отделения ЦСО обычно подразделяются на 2 зоны: Структура ЦСО предусматривает последовательное прохождение обрабатываемыми изделиями ряда этапов, начиная от приема и сортировки, стерилизации, хранения простерилизованных изделий, и выдачи их для проведения соответствующих манипуляций. В нестерильной зоне располагаются: В стерильной зоне располагаются: Уборку производственных помещений ЦСО проводят 1 раз в день с обязательным применением дезинфицирующих средств. В ЦСО должна быть обязательно оборудована приточно-вытяжная вентиляция. Полы в этом отделении должны быть покрыты гидроизоляцией, обложены плиткой или покрыты линолеумом. Потолки покрашены масляной краской. При планировании работы ЦСО необходимо предусматривать организацию 2-х поточной обработки:. Контроль санитарно-гигиенического состояния ЦСО проводится прежде всего микробиологическими методами. При проведении контроля исследуют воздух в ЦСО, делают смывы с предметов медицинского назначения и оборудования, проверяют качество стерилизации. Основным критерием удовлетворительного санитарного состояния ЦСО является: FAQ Обратная связь Вопросы и предложения. Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Саратовский государственный медицинский университет им. Основные противоэпидемические мероприятия для предотвращения возникновения ВБИ Стерилизация — удаление или уничтожение всех живых микроорганизмов вегетативных и споровых форм внутри или на поверхности предметов. Методы стерилизации Физические методы. В корпусе шкафа расположены рабочая камера, в которой имеются полки для размещения предметов для обработки и нагревательные элементы, которые служат для равномерного нагрева воздуха в рабочей камере Режимы стерилизации: Контроль стерилизации Контроль стерилизации осуществляется физическими, химическими и биологическими методами. Центральное стерилизационное отделение в лпу цсо. Функции центрального стерилизационного отделения ЦСО: При планировании работы ЦСО необходимо предусматривать организацию 2-х поточной обработки: Соседние файлы в папке 1 занятие
Значение морепродуктов в питании
Как стать следователем полиции девушке
Powered by smf новости спорта казахстана борьба
Бизнес план пивной
Амстердам москва расписание